Паразиты рыб: Как не заразиться паразитами при употреблении рыбы – пять правил

Содержание

Как не заразиться паразитами при употреблении рыбы – пять правил

Правила по безопасному приготовлению и употреблению рыбы «Ветеринария и жизнь» составила вместе с экспертами Брянской межобластной ветеринарной лаборатории – референтного центра Россельхознадзора.

Правило 1: тщательно промыть

Эксперты рекомендуют тщательно чистить рыбу, промывая проточной водой. Важно также очищать все инструменты, которые были использованы для разделывания рыбы.

Правило 2: термически обработать

Большинство случаев заражения паразитарными заболеваниями происходит при употреблении сырой и малосоленой рыбы, а также продукции, которая была термически недостаточно обработана. В связи с этим эксперты настоятельно рекомендуют избегать в рационе сырой рыбы и не пробовать ее в процессе приготовления блюда.

«Необходимо помнить: если человек не видит личинок гельминтов, это не значит, что их действительно нет», – предупреждает Галина Сафрошина, завсектором пищевой микробиологии и ветеринарно-санитарной экспертизы ФГБУ «Брянская МВЛ».

Правило 3: варить и жарить более 20 минут

Проваривать и прожаривать рыбу необходимо не менее 20 минут. Крупные куски следует жарить в распластанном виде. Что касается выпечки, то для нее филе рыбы лучше всего разрезать на небольшие кусочки. По рекомендации специалистов, рыбные пироги и пирожки необходимо выпекать не менее 30 минут.

Правило 4: коптить после посола

Холодное копчение рыбы необходимо проводить лишь после ее предварительного посола либо после вымораживания. Таким образом риск заражения удастся снизить.

Правило 5: обезопасить домашних животных

Важно обезопасить не только себя, но и своих питомцев. Нельзя скармливать им сырую рыбу и рыбные отходы. Животное рискует не только заразиться паразитами, но и стать угрозой для окружающих, предупреждают специалисты.

Но и те паразиты, что не представляют опасности для человека, могут привести к другим серьезным последствиям — вплоть до полной гибели рыбы в водоеме. Признаки заражения рыбы паразитами могут быть следующие:

— Мутные глаза

«При мутных глазах может быть подозрение, что это диплостомоз (заболевание рыб, возбудителем которого являются личинки – метацеркарии)», – рассказала главный ветврач сектора бактериологии, паразитологии и микологии ФГБУ «Брянская МВЛ» Римма Казачкова.

— Гельминты под чешуей

Иногда красные гельминты длиной несколько сантиметров могут быть видны невооруженным глазом из-под чешуи рыбы. Эти паразиты вызывают филометроидоз (гельминтозное заболевание), пояснила Римма Казачкова.

— Вздутое брюшко

Этот признак также может свидетельствовать о том, что рыба заражена паразитами. Например, личинками лигул.

Паразиты рыб как биоиндикаторы санитарного состояния водоемов Текст научной статьи по специальности «Биологические науки»

УДК 591.69-567.1/.5

ББК 28.083.66

Д 41

Н.Д. Джимова

Паразиты рыб как биоиндикаторы санитарного состояния водоемов

(Рецензирована)

Аннотация

Изучена паразитофауна рыб водоемов Майкопского и Гиагинского районов, расположенных в поймах рек Ульки, Гиаги, Белой. Обнаружено 64 вида паразитов большинство которых виды с прямым циклом развития. Паразитологическому исследованию подвергались рыбы Тщикского водохранилища, видовой состав которых отличается наибольшим видовым разнообразием. Выявлено изменение видового состава паразитов при изменении гидробиологического режима водоемов Республики Адыгея, что дало возможность определить паразитов чутко реагирующие на негативные влияния антропогенных факторов среды.

Ключевые слова: паразитофауна, мониторинг, олигосапробный, мезосапробный, эпизоотия, биоиндикатор, таксон, экстенсивность, интенсивность, экосистема.

N.D. Djimova

Fish parasites as bioindicators of a sanitary condition of fresh water reservoirs

Abstract

The paper examines the fish parasite fauna of reservoirs in the Maikop and the Giaginsky regions located in flood-lands of the Ulka, Giaga and Belaya rivers. Sixty-four species of parasites the majority of which are with a direct cycle of development have been revealed. The parasitological investigation was made for the Tshchiksky water basin fishes whose specific structure differs in the greatest specific diversity. The author has revealed the alteration of specific structure of parasites at the change of a hydrobiological mode of Adygheya Republic reservoirs. This has enabled the author to define parasites reacting sensitively on negative influences of the anthropogenic factors of environment.

Key words: parasite fauna, monitoring, oligosaprobic, mesosaprobic, the epizoothy, the bioindicator, taxon, extensiveness, intensity, ecosystem.

Цель работы: выявление видового состава паразитов.

Задачи: использование полученных результатов для оценки санитарного состояния водоемов и уровня антропогенного воздействия на водные экосистемы.

Территорию Адыгеи пересекает большое количество рек, большинство которых берут свое начало с Главного Кавказского хребта и его отрогов, принадлежащих к бассейну Азовского моря. На территории Адыгеи имеется 6 крупных водохранилищ, 100 прудов. За последние годы затор воды заметно сократился, что связано с падением производства. Качество большинства водоемов не отвечает требованиям, предъявляемым к воде хозяйственно-питьевого, культурно-бытового и рыбохозяйственного водопользования. На все изменения, происходящие в воде нашей республики, гидробионты реагируют по-разному. Одни виды уменьшаются в численности, другие выпадают, третьи появляются в большом количестве. Поэтому необходимо проводить наблюдения и контроль за состоянием окружающей среды на определенной территории, в задачу которого входит оценка своевременного состояния природы. При оценке водных экосистем исследования фауны рыб и их паразитов является актуальным, т. к. они связанны с широким кругом гидробионтов. Это дает возможность использования многих видов паразитов как биоиндикаторов состояния водных экосистем.

Материал и методы исследования

Работа проводилась с 1975 по 2004 гг. За этот длительный период удалось выявить видовой состав паразитов и его коренное изменение за последние годы. Комплексное изучение паразитов проходило в водоемах Майкопского р-она: водоемы ВИРа;

х. Цветочный; х. Родниковского; ст. Ханской. Все эти водоемы расположены недалеко от населенных пунктов и подвергаются антропогенному воздействию. Водоемы Гиагинского р-на, в основном, носят русловой характер. Исследования проводились недалеко от населенных пунктов — это Красная Улька; ст. Гиагинская; ст Келермесская.

Помимо водоемов исследовано Тщикское водохранилище находящееся в районе а. Адамий и естественные водоемы рек: Улька и Гиага.

Всего за весь период методом полного и неполного паразитологического вскрытия исследовано 2500 экз. рыб [1].

Паразитологическому вскрытию подвергались следующие виды рыб: карп, сазан, толстолобик, голавль, кубанская быстрянка, пескарь, усач, уклея, жерех, окунь, ерш, красноперка. Время вскрытия: май — июнь.

Результаты и обсуждения

Водоемы Майкопского района расположены в предгорной зоне, которые по своим размерам, гидробиологическому режиму отличаются друг от друга. Некоторые водоемы подвергаются антропогенному фактору (х. Гавердовский, х. Цветочных), что приводит к нарушению гидрохимического режима. Использование водоемов с целью выращивания товарной рыбы с применением дополнительного корма повышает содержание органики в воде. Отсюда сильное заражение рыб простейшими — триходинами.ш. при изменении экологических факторов может вызвать эпизоотию.

Водоемы Гиагинского района отличаются от водоемов Майкопского района, по своему происхождению они носят русловой характер, хорошо прогреваемые, берега частично зарастают растительностью. Некоторые водоемы используются для выращивания товарной рыбы. Хорошо развит зоопланктон и зообентос — промежуточные хозяева паразитов. В водоемах наблюдается незначительное течение воды. Химический состав воды постоянно меняется из-за поступающих сточных вод от коммунально- бытовых и сельскохозяйственных предприятий, оказывающих лимитирующее влияние на гидрофауну, среди которых имеются промежуточные хозяева гельминтов. При сильном изменении химизма воды, численность многих паразитов падает, другие, наоборот, проявляют устойчивость, в частности, бокоплавы — промежуточные хозяева скребней.

В результате проведенных исследований 6-ти видов рыб (сазан, пескарь, уклея, кубанская быстрянка, красноперка, ерш) обнаружено 32 вида паразитов, из них: мисксоспоридии -12, инфузории-6, моногенетические сосальщики — 8, ленточные черви -2, трематоды — 2, раки — 1, моллюски -1. Экстенсивность и интенсивность заражения паразитами с прямым циклом развития высокая. Некоторые виды триходин в массовом количестве отмечаются на жабрах рыб. Нами большое внимание уделялось исследованию

эктопаразитов, т.к. они являются наиболее чувствительными к изменению внешних факторов среды и могут быть биологическими индикаторами водоема. К таким следует отнести: Myxobolus obesus, Diplozoon paradoxum.

Кишечные паразиты — Caryophyllaeus laticeps, Proteocephalus torulosus, Rhabdochona denudata, Pomphorynchus laevis имеют промежуточных хозяев, которые ведут бентосный или планктонный образ жизни. Эти виды впервые обнаружены в наших водоемах. Они могут вызвать эпизоотию и массовую гибель рыбы. Появление этих гельминтов скорее всего связано с влиянием на паразитофауну антропогенного фактора, который изменяет экологическое равновесие в сторону уменьшения или увеличения численности паразитов.

Тщикское водохранилище построено на основе типично горной реки Белой. Температура воды систематически изменяется. Кроме того, периодический спуск воды и последующее его затопление делает неустойчивым гидрологический режим, в свою очередь лимитирующий качественный и количественный состав всей гидрофауны. Отсюда и обеднение паразитофауны. Паразитологические исследования 9 видов рыб (сазан, толстолобик, судак, жерех, окунь, уклея, ерш, пескарь) насчитывают 48 паразитов. Большинство видов с прямым циклом развития. Найдены виды, не обнаруженные в вышеотмеченных водоемах, жизненные циклы которых, связаны с планктонными организмами — Camallanus truncatus, Philometra rischta, Proteocephalus percae, Proteocephalus cernuae и бентосными животными — Philodistomum elongatum, Bunodera luciopercae. Среди паразитов с прямым циклом развития обнаружены миксоспоридии, моногенетические сосальщики. На некоторых рыбах отмечался рачек — Ergasilus sieboldi, личинки которых ведут планктонный образ жизни.

Санитарно-эпизоотическое состояние водоема является благополучным, патогенных видов для человека не обнаружены.

Однако, по ранее полученным результатам обнаружены виды простейших, цестод, которые могут вызвать массовые эпизоотии. Такая картина нами была зарегистрирована в 1999 году, когда триходины вызвали массовую гибель толстолобика, причиной чего послужило смещение экологических факторов, что привело к вспышке инвазии.

Таким образом, среди обнаруженных паразитов выявлены виды, которые по-разному относятся на изменение внешних условий, особенно в период повышения антропогенных факторов. С этой целью обнаруженные паразиты были разделены на 2 группы: неустойчивые и устойчивые [3].

Ихтиопаразиты, не устойчивые к загрязнению в водной среде

Ежегодные паразитологические вскрытия рыб, показали, что в наших условиях чувствительными к неблагоприятным условиям окружающей среды являются-Myxobolus obesus, M. macrocapsularis, Trichodina nigra, Dactylogyrus vastator.

Ихтиопаразиты, устойчивые к загрязнению внешней среды

Для наших водоемов к этой группе относятся: Myxobolus musculi, M.pscudodispar, Dactylogyrus anchoratus, Diplozoon paradoxum, Pomphorynchus laevis.

Дальнейшие исследования связаны с изучением паразитофауны рек Гиаги и Ульки. Источниками питания этих рек служат грунтовые воды. Скорость течения воды — 0,5 м/с. Берега местами зарастают камышом и другой растительностью. Ихтиофауна представлена следующими видами рыб: голавль, красноперка, пескарь, усач, уклея, кубанская быстрянка, густера.

Обе реки одинаковы по своим физико-химическим показателям. Однако, река Гиага больше подвергается антропогенному фактору. Здесь созданы карьерные разработки. Применение тяжелой техники, вывоз гравия, периодический спуск воды резко изменяет гидрологический режим, что приводит к изменению не только паразитофауны, но и ихтиофауны.

У шести видов рыб из реки Гиаги было обнаружено -36 видов паразитов, из реки Ульки — 42 вида паразитов.

Подавляющее число паразитов — с прямым циклом развития — это триходины, моногенетические сосальщики, поражающие жабры, кожу. Из гельминтов у всех видов рыб отмечался Pomphorynchus laevis. Регулярные исследования в течение с 1985г. в один и тот же период года (май — июнь) позволили проследить изменение паразитофауны рыб. За этот промежуток времени состав паразитов изменялся в сторону уменьшения или увеличения численности паразитов, что связано с влиянием антропогенных факторов. На изменение видового состава паразитов также оказывают влияние паводки, порой носящие катастрофический характер. Это приводит к изменению численности видового состава паразитов, что затрудняет выявить наиболее чувствительные группы паразитов, которых можно использовать в качестве паразитологического метода для определения загрязненности воды и токсикологической ситуации.

Заключение

Обнаруженные паразиты рыб водоемов Республики Адыгея являются составной частью биоценозовв, которые, как и свободноживущие организмы реагируют на антропогенные изменения, происходящие в воде, и могут быть индикаторами ее состояния. Ухудшение гидробиологического режима водоема изменяет видовое разнообразие фауны беспозвоночных, а это приводит к выпадению промежуточных хозяев паразитов. Такие условия глубоко изменяют видовой состав паразитов, что дает возможность использовать паразитологическую ситуацию в оценке состояния водоемов и определения уровня антропогенного воздействия на водные экосистемы.

Примечания:

1. Цейтлин Ю.Г. Паразитический мониторинг -как основа контрольно-санитарного состояния водоемов и качества воды // Современные проблемы паразитологии, зоологии и экологии. Калининград, 2004. 72 с.

2. Быховская-Павловская И.Е. Паразиты рыб. Руководство по изучению. Л., 1985. 120 с.

3. Богданова Е.А. Паразиты рыб как биоиндикаторы токсикологической ситуации в водоеме. СПб., 1993. 23 с.

References:

1. Tseitlin Yu.G. Parasitic monitoring as the basis a controlling-sanitary condition of reservoirs and quality of water // Modern problems of parasitology, zoology and ecology. Kaliningrad, 2004. 72 pp.

2. Bykhovskaya-Pavlovskaya I.E. Fish parasites. A

study guide. L., 1985. 120 pp.

3. Bogdanova E.A. Fish parasites as bioindicators of

a toxicological situation in a reservoir. SPb.,

1993. 23 pp.

Паразиты рыб в прудовых хозяйствах Кубани Текст научной статьи по специальности «Биологические науки»

Фауна, морфология, систематика паразитов

УДК 639.3:619:616.995.1

ПАРАЗИТЫ РЫБ В ПРУДОВ ЫХ ХОЗЯЙСТВАХ КУБАНИ

Е.С. ЛИСОВЕЦ соискатель

Краснодарская межобластная ветеринарная лаборатория Р.Т.САФИУЛЛИН доктор ветеринарныйх наук

Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии

им. К.И. Скрябина, 117218, г. Москва, ул. Б. Черемушкинская, 28, e-mail: [email protected]

В рыбоводных прудовых хозяйствах Краснодарского края исследовано 831 экз. рыб 6 видов. Зараженность составила 45,9 %. У рыб зарегистрировано 11 болезней, в том числе миксоболёз, ихтиофтириоз, три-ходиноз, дактилогироз, кавиоз, ботриоцефалёз, дипло-стомоз, аргулёз, лернеоз, синергазилез, эргазилёз. Зараженность паразитами составила карася, сазана, толстолобика пестрого 53,8-84 %, карпа, белого амура, толстолбика 20,9-44,7 %.

Ключевые слова: паразиты, рыба, прудовые хозяйства, Кубань.

Рыбоводство — важнейшая отрасль сельскохозяйственного производства Краснодарского края. Прудовый фонд края включает более 20,0 тыс. га прудовых площадей специализированных рыбхозов, около 40,0 тыс. га русловых водоемов. Площади питомников для выращивания рыбопосадочного материала составляют 3,5 тыс. га. Для целей рыбоводства используются более 30,0 тыс. га. лиманов, пригодных для выращивания рыбы.

В настоящее время на территории Краснодарского края деятельность в области рыбоводства осуществляют более 20 крупных специализированных полносистемных прудовых и 1000 фермерских хозяйств и индивидуальных предпринимателей. Они используют 1217 рыбопромысловых водоёмов и производят 20 % всей прудовой рыбы России. Потребление рыбной продукции в расчете на душу населения сократилось в 1,6 раза и составило около 10 кг в год, что в 2 раза меньше физиологической нормы. Эта продукция стала менее доступной для широких слоев населения из-за продолжающегося роста цен и низкой платежеспособности населения.

Природно-климатические условия Кубани способствуют развитию прудового рыбоводства. Так, с января по декабрь 2010 г. произведено 26328,08 т рыбы. Из имеющегося в крае прудового фонда в настоящее время для целей рыбоводства используется менее 50 % площадей. Основными препятствиями дальнейшему развитию прудовых хозяйств Краснодарского края и наращиванию ими объемов производства и вылова товарной рыбы являются сильная изношенность основных фондов, неудовлетворительное техническое состояние многих водоемов, заиленость и засоренность русел рек, что способствует развитию инфекционных и инвазионных болезней прудовых рыб.

Интенсивные технологии ведения прудового хозяйства предусматривают уплотненные посадки рыбы в пруды, что создаёт благоприятные условия для распространения различных болезней. Существенный экономический ущерб

отрасли наносят паразитарные болезни, снижающие продуктивность прудов рыбоводных хозяйств.

Паразитофауну рыб в крае изучали многие учёные [1-3]. Впервые у пестрых толстолобиков обнаружен и описан новый вид миксоспоридии Myxobolus haemophilus и предложена методика диагностирования его в крови рыб [2]. В прудовых хозяйствах Краснодарского края описана ассоциация псевдомоноза и миксоболёза, вызвавшая массовый падеж толстолобиков в осенний период [1]. Лысенко [3] провел системный анализ паразитофауны у 13 видов прудовых рыб в рыбоводных хозяйствах Краснодарского края и выявил у них 52 вида паразитов. В условиях края основным источником и резервуаром заражения прудовых рыб является «сорная рыба», а также растительноядные рыбы, завозимые из Китая и Дальнего Востока для акклиматизации.

Исходя из отмеченного, целью наших исследований было изучение паразитов прудовых рыб и вызываемых ими болезней в прудовых хозяйствах Кубани.

Материалы и методы Работу выполняли на базе кафедры паразитологии, ветсанэкспертизы и зоогигиены ФГБОУ ВПО Кубанский ГАУ и в ФГБУ «Краснодарская межобластная ветеринарная лаборатория» в период с января по декабрь 2010 г.

Основным объектом исследований являлась прудовая рыба рыбоводных хозяйств Краснодарского края 6 видов (толстолобик пестрый, толстолобик белый, карась, сазан, белый амур, карп). Вскрытие рыб осуществляли по методике полного паразитологического вскрытия [4]. Сбор и обработку паразитов осуществляли по общепринятым методикам. Видовой состав паразитов определяли до вида с помощью «Определителя паразитов пресноводных паразитов рыб» под редакцией Бауэра (1987) на кафедре паразитологии Куб-ГАУ. Для обнаружения спор миксоспоридий у пестрых толстолобиков использовали метод искусственного переваривания тканей рыб с последующим центрифугированием.

Паразитофауну изучали в 24 хозяйствах 7 районов Краснодарского края и в 4 хозяйствах 2 районов Республики Адыгея.

Результаты и обсуждение Проведенные в условиях Краснодарского края и Республики Адыгея систематические исследования 6 видов прудовых рыб показали, что в рыбоводных прудовых хозяйствах разной формы собственности они инвазированы 21 видом паразитов следующим образом: толстолобик белый — 9 видами: Myxobolus pavlowskii, Achmerov, 1954; M. dijagini, Achmerov, 1954; M. haemophilus Garcawi, Zverzhanowskyi, Lysenko 1989; Ichthyophthirius multifiliis Fouguet, 1876; Trichodina acuta Lorn, 1966; T. nigra Lorn, 1960; Diplostomum spataceum Rudolphi, 1819; Sinergasilus lieni Yin, 1949; Lemea elegans morpha ctenopharingodontisYin, 1960), толстолобик пестрый — 11 видами: M. pavlowskii, Achmerov, 1954; M. drjagini, Achmerov, 1954; M. haemophilus Garcawi, Zveryanowskii, Lysenko 1989; I. multifiliis Fouguet, 1876; T. acuta Lorn, 1966; T. nigra Lom, 1960; Dactylogyus vastator Nybelin, 1924; Dac. nobilus Long et Yu, 1958; D. spataceum Rudolphi, 1819; Sinergasilus lieni Yin, 1949; L. elegans morpha ctenopharingodontisYin, 1960), карась — 6 видами: I. multifiliis Fouguet, 1876; L. cypinacea Linnaeus, 1758; Argulus foliaceus Linnaeus, 1758; S. lieni Yin, 1949; D. spataceum Rudolphi, 1819; D. spataceum Rudolphi, 1819), сазан — 4 видами: Dac. extensus Mueller et Van Cleave, 1932; A. foliaceus Linnaeus, 1758; D. spataceum Rudolphi, 1819; Khawia sinensis Hsu, 1935), белый амур — 7 видами: Dac. ctenopharingodonis Achmerov, 1952; Kh. sinensis Hsu, 1935; Bothriocephalus opsariichthydis Yamaguti, 1934; D. spataceum Rudolphi, 1819; L. elegans morpha ctenopharingodontisYin, 1960; A. foliaceus Linnaeus, 1758; S. major Marckewitsch, 1940), карп — 12 видами: Dac. vastator Nybelin, 1924; Dac. 18

extensus Mueller et Van Cleave, 1932; Kh. sinensis Hsu, 1935; D. spataceum Rudolphi, 1819; L. elegans morpha ctenopharingodontisYin, 1960; A. foliaceus Linnaeus, 1758;M. dogieli J. et B. Bychowski, 1940; I. multifiliis Fouguet, 1876; T. nigra Lom, 1960; T. acuta Lom, 1966; Ergasilus sieboldi Nord mann, 1832; Botriocephalus opsariichthydis Yamaguti, 1934) (табл. 1).

1. Видовой состав паразитов в водоёмах прудовых хозяйств

Краснодарского к рая

Семейство Вид паразита Дефинитивные хозяева

Myxobolidae Myxobolus pavloskii Толстолобик пестрый, толстолобик белый

M. dijagini Толстолобик пестрый, толстолобик белый

M. dogieli Карп

M. haemophilus Толстолобик пестрый, толстолобик белый

Ophryoglenidae Ichthyophthirius multifiliis Толстолобик пестрый, толстолобик белый, карп, карась

Trichodinidae Trichodina acuta Толстолобик пестрый, толстолобик белый, карп

T. nigra Толстолобик пестрый, толстолобик белый, карп

Dactylogyridae Dactylogyrus vastator Карп, карась

Dac. aristichthys Толстолобик пестрый

Dac. nobilis Толстолобик пестрый

Dac. ctenopharyngodonis Белый амур

Dac. extensus Карп, сазан

Lytocestidae Khawia sinensis Белый амур, карп, сазан

Botriocephalidae Botriocephalus opsariichthydis белый амур, карп

Diplostomidae Diplostomum spathaceum Толстолобик пестрый, толстолобик белый, белый амур, карп,сазан, карась

Ergasilidae Ergasilus sieboldi Карп

Sinergasilus lieni Толстолобик пестрый, толстолобик белый

S. major Белый амур, карась

Lemaeidae Lemaea cyprinacea Карась

L. elegans Белый амур, карп, толстолобик пестрый, толстолобик белый

Argulidae Argulus foliaceus Карп, белый амур, карась, сазан

Систематические группы паразитов прудовых рыб, обнаруженные в водоёмах рыбоводных хозяйств, представлены 21 видом, которые относятся к 3 типам, 7 классам, 8 отрядам, 9 семействам, 13 родам (табл. 2). Простейшие представлены одним типом Cnidosporidia, 3 классами (Myxosporidia, Cyrtostomata, Peritricha), 3 отрядами, 3 семействами, 6 родами, 7 видами. Плоские черви Plathelminthes представлены 3 классами (Monogenea, Cestoda, Trematoda), членистоногие — одним типом Artropoda, одним классом Crustacea, одним отрядом, двумя семействами, 3 родами, 6 видами (табл. 2).

2. Систематические группы паразитов прудовых рыб _Краснодарского края_

Тип Класс Число

отрядов семейств родов видов

Cшdosporidia Myxosporidia 1 1 4 4

Cyrtostomata 1 1 1 1

Peritricha 1 1 1 2

Plathelminthes Monogenea 1 1 1 5

Cestoda 2 2 2 2

Trematoda 1 1 1 1

Arthropoda Crustacea 1 2 3 6

Всего: 7 8 9 13 21

Следует отметить степень зараженности различных видов рыб в прудовых хозяйствах Краснодарского края и Республике Адыгея (табл. 3). Всего вскрыто 831 экз. прудовых рыб, из них инвазировано 382 экз., общая экстенсивность инвазии составила 45,9 %. У рыб зарегистрировано 11 болезней: миксоболёз, ихтиофтириоз, триходиноз, дактилогироз, кавиоз, ботриоцефалёз, диплостомоз, аргулёз, лернеоз, синергазилёз, эргазилёз. В рыбоводных хозяйствах общая экстенсивность инвазии доминирует у карася (53,84 %), повышаясь у сазана (63,95 %) и достигает максимума у толстолобика пестрого (84 %), субдоминантами выявлены карп (20,9 %), белый амур (21,62 %), толстолобик белый (44,8 %).

Зараженность по видам рыб была следующей: миксоболёз у 1,46-4,68 % карпа, толстолобика белого и пестрого, ихтиофтириоз у 1,62-6,73 % карпа, толстолобика белого, пестрого, карася, триходиноз у 2,93-17 % карпа, толстолобика пестрого. Дактилогирами заражены 5 видов рыб, за исключением толстолобика белого. Наименьшая зараженность была у белого амура и повышалась у толстолобика пестрого до 15,2 %. Кавиоз зарегистрирован у трех видов рыб, наименьшая зараженность была у карпа, а наибольшая у сазана (1,46-19,1 %). Ботриоцефалы выявлены только у карпа и белого амура (0,9-1,24 %). Диплостомами заражены все 6 видов рыб, наименьшая зараженность была у карпа, наибольшая у пестрого толстолобика (9,76-46,9 %). Аргулез выявлен у четырех видов рыб, наименьшая зараженность была у карпа, наибольшая у карася (1,46-7,6 %), лернеоз зарегистрирован у 5 видов рыб, наименьшая зараженность была у карпа, а наибольшая у толстолобика пестрого (0,98-8 %). Синергазилез выявлен у 5 видов рыб с наименьшей зараженностью у карася серебряного и наибольшей — у пестрого толстолобика (до 18 %). Эргазилез выявлен нами только у карпа (6,3 %).

Результаты проведенных в условиях Краснодарского края исследований согласуются с данными наших предшественников по видовому составу паразитов прудовых рыб и дополняют их по экстенсивности инвазии у рыб разных видов.

Таким образом, в Краснодарском крае у 6 видов наиболее распространенных рыб выявлен 21 вид паразитов: из них у сазана 4 вида, карася серебряного 6, белого амура 7, толстолобика белого 9, пестрого толстолобика 11, карпа 12 видов. Систематические группы паразитов, обнаруженные в рыбоводных хозяйствах с различной формой собственности, относятся к 3 типам, 7 классам, 8 отрядам, 9 семействам, 13 родам, 21 виду.

3. Зараженность паразитами различных видов рыб в прудовых хозяйствах Краснодарского края за 2010 г.

Вид рыб Исследовано рыб, экз. Заражено, экз. ЭИ, % В том числе заражено рыб по видам паразитов, %

Миксоболёз Ихтиофтириоз Триходиноз Дактилогироз Кавиоз Ботриоцефалез Диплостомоз Аргулёз Лернеоз Синергазилез Эргазилёз

Толстолобик белый 201 90 44,78 4,68 3,84 17,0 13,8 2,48 2,98

Толстолобик пестрый 50 42 84,0 1,6 6,5 3,5 13,2 41,2 6,0 12,0

Карась 104 56 53,84 — 14,42 — — — — 20,5 9,6 3,9 5,42 —

Сазан 86 55 63,95 8,1 19,1 33,3 3,4 — — —

Белый амур 185 62 33,51 3,24 2,1 1,24 11,97 7,5 2,7 4,8

Карп 205 77 37,56 1,46 1,62 2,93 4,39 1,46 0,9 9,76 ],46 0,98 6,3 6,3

Итого 831 382 45,97

Литература

1. Гаркави Б.Л., Звержановский М.И., Лысенко А.А. и др. Ассоциативное заболевание толстолобиков псевдомонозом и миксоболезом // Матер. докл. науч. конф. «Ассоциативные паразитарные болезни, проблемы экологии и терапии». — М., 1995. — С. 45-46.

2. Гаркави Б.Л., Звержановский М.И., Лысенко А.А. и др. Слизистые споровики молоди толстолобиков в прудовых хозяйствах Кубани // Сб. раб. «Инвазионные болезни с. х. животных». — Л., 1989. — С. 45-50.

3. Лысенко А.А. Формирование паразитарной системы у рыб в прудовых хозяйствах и естественных водоемах и меры борьбы с паразитозами в условиях Краснодарского края: Автореф. дис. … д-ра вет. наук. — Иваново, 2006. -65 с.

4. Проведение ихтиологических исследований (методические указания). Ч. 1, 2. — М., 1968. — 67 с.

Parasites of fishes in pond farms of Kuban E.S. Lisovets, R.T. Safiullin

It is investigated 831 copies of fishes of 6 spp. in fish-breeding farms in Krasnodar region. 45,9 % of them are infected by parasites. It is registered 11 parasites in fishes. Crucian, sazan, carp colorful are infected at 53,8-84 %, carp, white cupid — at 20,9-44,7 %.

Key words: parasites, fish, pond farms, Kuban.

Под влиянием глазного паразита рыбы потеряли страх

Tom Koerner / USFWS / Flickr.com

Российские и финский исследователи показали, что паразитический плоский червь Diplostomum pseudospathaceum, заражающий рыб в стадии личинки и вырастающий до взрослой особи, управляет их поведением. Эти черви размножаются в кишечнике птиц, питающихся рыбой. Чтобы туда попасть, паразит заставляет рыбу быть более активной и плавать в верхних слоях воды, где хищным птицам проще ее заметить и поймать. Исследование опубликовано в Behavioral Ecology and Sociobiology, коротко о нем рассказывает New Scientist.

Жизненный цикл D.pseudospathaceum проходит в трех хозяйских организмах. Взрослые черви спариваются (или размножаются партеногенезом) и откладывают яйца в желудочно-кишечном тракте птиц, питающихся рыбой. Яйца выходят наружу вместе с пометом и попадают в воду, где из них вылупляются личинки, способные плавать с помощью биения ресничек. Личинки заражают промежуточного хозяина — брюхоногого моллюска, внутри которого они развиваются и опять выходят наружу. Затем они ищут следующего промежуточного хозяина, на этот раз рыбу. Личинки проникают через кожу животного и попадают ему в глаза, где развиваются до взрослой особи. Затем рыбу съедает птица и начинается новый цикл.

Чтобы скрыться от хищников, рыбы прячутся в укрытие или затаиваются на глубине, а после неудачного нападения хищника «замирают», чтобы птица не сделала второй попытки их поймать. Если рыба настолько осторожна, вероятность попасть в кишечник птицы для паразита уменьшается, поэтому он идет на различные ухищрения и меняет поведение хозяйской особи. Так, червь препятствует радужной форели менять тон защитной окраски, чтобы приспособиться к различной освещенности под водой. Кроме того, паразит меняет стайное поведение рыб. Обычно оно помогает животным скрыться от хищников. Рыбы же, инфицированные D.рseudospathaceum, образуют малочисленные стаи, которые, к тому же, легко разделяются на более мелкие группы. Интересно, что «юный» паразит, только что превратившийся из личинки в червя и еще не превратившийся в зрелую особь, наоборот, заставляет рыб вести себя более осторожно и не проявлять особой активности, чтобы не попасться хищникам.

Авторы нового исследования предположили, что взрослый червь может заставлять рыб плавать ближе к поверхности и быть более активными, чтобы хищнику было легче их заметить. Также ученые предположили, что паразит может влиять на активность своего хозяина после нападения хищника и побуждать его быстрее выходить из «замершего» состояния.

Чтобы проверить свою гипотезу, исследователи заразили радужную форель D.рseudospathaceum и подождали месяц, пока личинка превратится во взрослую особь. Затем они провели эксперименты, в которых следили за поведением инфицированных особей и сравнивали его с поведением контрольной группы. Чтобы выяснить, как паразит влияет на поведение хозяина после того, как на него напал хищник, ученые имитировали нападение птицы, проводя в 15-20 сантиметрах над водой пластиной размерами 35х20 сантиметров, отбрасывавшей тень на воду.

Гипотеза ученых подтвердилась — зараженные червем рыбы действительно плавали быстрее и держались ближе к поверхности, чем особи из контрольной группы. Также оказалось, что инфицированные рыбы «оживают» гораздо быстрее, чем здоровые.

К сожалению, авторы работы не исследовали механизм, с помощью которого паразитические черви влияют на хозяина. Они сделали только теоретические предположения. Ранее было показано, что D.рseudospathaceum вызывает у рыб катаракту, которая, ухудшает у них зрение. Однако, отмечают ученые, ухудшение зрения не объясняет возрастающую активность инфицированных рыб. Вероятно, паразит влияет на поведение хозяина с помощью каких-то нейроактивных секретов.

Ранее исследователи показали, что рыбки гуппи в присутствии хищника образуют более стабильные социальные группы: они реже покидали уже существующие группы и дольше держались вместе.

Екатерина Русакова

(PDF) Паразиты рыб. Цестоды отряда Caryophyllidea у рыб Рыбинского водохранилища

253

Рассматривая специфичность различных видов кариофиллид по отношению к

хозяевам в Рыбинском водохранилище, легко заметить, что широкой специфичностью

отличается Caryophyllaeides fennica, паразитирующий у язя, плотвы, леща и густеры.

Caryophyllaeus laticeps встречается у леща и густеры, Archigetes sieboldi также имеет

двух хозяев – леща и плотву. У других видов карповых в водохранилище (синец,

чехонь, уклейка, жерех, голавль) гвоздичники не обнаружены.

За время существования Рыбинского водохранилища произошли существенные

изменения в специфичности кариофиллид и их обилии. До начала 70-х годов

Caryophyllaeus laticeps был обычен у леща, густеры, синца, плотвы и язя (Столяров,

1952, 1954; Бабушкин, Тихомирова, 1964), а в Волге до ее зарегулирования он

встречался также у ельца и голавля (Догель, 1940 по: Богданова, Никольская, 1965).

Caryophyllaeides fennica, напротив, проявлял крайне узкую специфичность и отмечался

разными авторами только у плотвы (Изюмова, 1959; Бабушкин, Тихомирова, 1964).

Численность кариофиллид связана с обилием их промежуточных хозяев-

олигохет. После заполнения водохранилища резко снизилась численность и биомасса

тубифицид, сохранившись на исходном уровне лишь в руслах затопленных рек.

Позднее они стали постепенно нарастать и достигли своей стабилизации к шестому –

седьмому годам существования водохранилища (Поддубная, 1988). Вслед за этим

изменялась и численность гвоздичников: сначала она резко снизилась, в дальнейшем

наблюдался ее подъем, а также расширение специфичности паразитов (табл. 14.5,

14.6).

Для характеристики динамики численности кариофиллид мы использовали

данные по зараженности рыб, полученные в Волжском (в районах п. Борок, п.

Переборы, и бывшего г. Молога), Главного (район п. Брейтово) и Моложского (у д.

Противье) плесах в различные периоды формирования экосистемы водохранилища.

Несмотря на то, что методики сбора материала, применяемые разными

исследователями, а также места и даты сбора несколько отличаются, тенденция в

изменении численности цестод прослеживается довольно четко.

Численность Caryophyllaeus laticeps у леща достигла максимума в конце 50-х

годов и с тех пор остается почти неизменной (табл. 14.5). У остальных видов рыб она

также была максимальной в эти годы, но в дальнейшем произошло ее снижение. В

настоящее время у синца, язя и плотвы C. laticeps отсутствует, у густеры встречается

очень редко. В процессе формирования структуры биологических сообществ каждый

из названных видов рыб нашел свою трофическую нишу и специализировался на

питании определенной группой организмов. На современном этапе синец в

Какие бывают простейшие паразиты рыб?

Большинство паразитических инфекций рыб вызвано Простейшими. Далее в статье описаны наиболее распространенные паразитические Простейшие, за исключением, возбудителя ихтиофтириоза (о нем смотрите статью).

Trichodina

Род Trichodina относится к семейству Trichodinidae, куда также входят Paratrichodina, Trichodonella, Tripartiella и Vauchomia. Многие триходиниды патогенные, а вызываемое ими заболевание называется триходиниоз.

Триходины (Trichodina-sp)

При рассмотрении сверху триходина имеет круглую форму; а при рассмотрении сбоку – она как блюдце или колпачок. Паразит покрыт тремя кольцами ресничек (мелкие, волосковидные отростки), опоясывающими клетку и ротовую полость. Реснички используются для передвижения и кормления. Тело укреплено жестким кольцом взаимосвязанных дисков, названного хитиноидом или дентикулярным кольцом.

Каждый диск имеет шипообранный внутренний луч, направленный к центру кольца. Trichodina быстро скользит по жабрам и поверхности кожи. Обычно паразит отмечается на жабрах, но также может быть и на других частях тела, особенно, когда рыбка ослаблена. Триходина заражает практически любой вид рыб, и непосредственно или опосредованно вызывает их гибель.

Явных внешних повреждений покровов при триходиниозе не возникает, поэтому заболевание диагностируется почти исключительно путем микроскопического исследования. Часто можно видеть воспаление жабр.

Инфицированные особи ведут себя вяло, теряют вес, трутся о предметы, пытаясь избавиться от паразитов. Число триходин может быть незначительно и не вызывать заболевания. Опыт диагностики инфекционной нагрузки паразита, в совокупности с другими патогенетическими и средовыми факторами, важен в определении возбудителя.

Обычно заражение триходинами обусловлено высокой плотностью посадки и перекармливанием рыб, что, в свою очередь, вызвано стремлением повысить продуктивность и прибыль. Такая агрессивная практика управления выгодна до определенного момента. Но в некоторой точке система прекращает справляться с биологической нагрузкой, ухудшается качество воды, соответственно, снижается производительность, возрастает смертность, портиться вкус рыбы. Перекармливание приводит к повышению уровня аммония и формированию среды, благоприятной для развития триходин. Кроме того, возрастает риск распространения и генерализации инфекции. Если рыба культивируется в условиях плотной посадки (например, в садках), инфекция быстро распространится среди особей.

Лечение триходиниоза

Обработка рыб, инфицированных паразитами Trichodina, проводится с использованием растворов формалина, сульфата меди (CuSO4), перманганат калия (KMnO4) и уксусную кислоту. Обычно триходина погибает после единичной обработки, и рыба полностью выздоравливает.

Trichophrya (также известная как Capriniana)

Существует несколько видов рода Trichophrya. Эти реснитчатые простейшие паразиты неподвижны во взрослом состоянии. Они размножаются почкованием и образованием телетрох (teletroch). Телетрохи свободно перемещаются и очень похожи на триходин, хотя и не имеют дентикулярного кольца. У них есть хоботок для кормления и тентаклы, выступающие из сферической клетки и напоминающие булавки, застрявшие в подушке. Часто эти тентаклы отсутствуют. Внутри Trichophrya присутствуют характерные оранжево-коричневые гранулы.

Сидячие инфузории (Trichophyra spp.)

Хотя некоторые исследователи относят этих сосущих инфузорий к комменсальным организмам (т.е. не паразитируют на рыбе, а просто живут на ней и питаются дебрисом), другие рассматривают их как паразитов, которые в больших количествах вызывают стресс и смертность среди рыб. Авторы наблюдали, что большие количества Trichophrya вызывают гибель рыб, но не всегда. Возможно, различные виды обладают различной вирулентностью и/или сопротивляемость видов рыб отличается. Трихофрии (Trichophrya) живут на жабрах, поэтому могут вызвать гибель вследствие перекрытия доступа кислорода. Сосущие инфузории размножаются в больших количествах в водоемах с высокой органической нагрузкой, где плотность посадки рыб велика.

Ambiphrya и Apiosoma

Ambiphrya и Apiosoma являются реснитчатыми инфузориями. Во взрослом состоянии паразиты неподвижны. Они прикрепляются к жабрам и коже рыб. Ambiphrya (формально, Scyphidia) имеет бочкообразную форму и прикрепляется к покровам рыб с помощью множества плоских скопул или удерживающего органа на заднем конце тела. Вокруг рта и посередине тела (реснитчатый поясок) у инфузории располагается кольцо из ресничек. Обычно ядро у Ambiphrya лентообразной формы.

Массированное заражение малька тиляпии Ambiphrya ameiuri (слева сверху), распределение паразита на коже (справа сверху) и жаберных лепестках тиляпии (www.sci.sdsu.edu/salton/Ambiphryaameiuri.html)

Apiosoma (формально Glossatella) имеет длинное тело с маленьким участком для прикрепления. У неё нет реснитчатого пояска, а только оральное кольцо ресничек. Ядро клетки более компактное, коническое или треугольное.

Эти паразиты не повреждают ткани рыб, но в высокой плотности препятствуют поступлению кислорода. Как и большинство простейших, Ambiphrya и Apiosoma более опасны в условиях высокой органической нагрузки и плотности посадки рыб. От инфузорий обычно избавляются единичной обработкой воды формалином, CuSo4, KMnO4. Они также могут самоустраниться с улучшением условий среды.

Ichthyobodo necator (формально Costia necatrix)

Ichthyobodo очень маленькое простейшее, размер которого практически равен размеру эритроцита. Этот одноклеточный паразит похож на запятую в тетради. Он использует жгутик для прикрепления к хозяину. Жгутик длинная, плетевидная структура, позволяющая организму двигаться в воде. Жгутиконосцы обычно имеют от одного до четырех жгутиков, тогда как реснитчатые микроорганизмы обычно имеют сотни ресничек. Будучи неприкрепленным, возбудитель ихтиободоза (костиоза) беспорядочно перемещается по спиральной траектории. В прикрепленном состоянии жгутик фиксируется к телу рыбы, и движения паразита часто напоминают мерцание пламени свечи. Иногда паразит обрамляет жабры, делая их кромку похожей на пилу. Раздражение от ихтиободоза вызывает воспаление жабр.

Костии (Ichthyobodo necator). прикрепленные к тканям хозяина

Из-за маленьких размеров, костий Ichthyobodo necator сложно увидеть под 100-кратным увеличением, особенно через низкокачественную оптику. Их четко видно под 200-х кратном увеличением.

Паразиты находятся на коже и жабрах. Он традиционно встречается в переполненных условиях среды, например, садках, где обуславливает высокую смертность. Инфекция развивается при температурах 2 до 30°C.
Обработка обычно включает формалин, CuSO4 и KMnO4.

Хилодонеллез (Chilodonella)

Хилодонеллиды (Chilodonella) овальные, уплощенные инфузории с параллельными рядами ресничек и зубчатым передним концом. Они плавают беспорядочно, подобно возбудителям ихтиободоза, однако хилодонеллы гораздо крупнее. Эти инфузории скользят по поверхности жабр и кожи рыб.

Chilodonella uncinata; брюшная сторона: Циркулярный ряд ротовых ресничек (cW), пищеварительная вакуоль (Re), поле ресничек справа (rW), предротовые реснички (pW), поле ресничек слева (lW) и сократительная вакуоль (KV) (илл. www.plingfactory.de/Science/Atlas/KennkartenProtista/source/Chilodonella_uncinata.html)

Они встречаются повсеместно и паразитируют на беспозвоночных и позвоночных. Важнейшими паразитами рыб являются Chilodonella piscicola (Zacharias, 1894) Jankowski, 1980 (syn. C . cyprini, Moroff, 1902) и Chilodonella hexasticha (Kiernik, 1909). Оба вида не имеют видовой специфичности к хозяину, у них моноксенный жизненный цикл (только одна форма в цикле). На влажных препаратах жабр зараженных рыб можно видеть воспаленные участки [Padua S.B. First record of Chilodonella hexasticha (Ciliophora: Chilodonellidae) in Brazilian cultured fish: A morphological and pathological assessment. Veterinary Parasitology. 191. 154– 160. 2013].

Инфузории вызывают тяжелые поражения жабр, покровов тела и плавников хозяина. В частности, у зараженных видом Chilodonella hexasticha особей канального сома (Ictalurus punctatus) и золотой рыбки (Carassius auratus) отмечаются гиперплазия эпителия, слипание жаберных тычинок, инфильтрат при воспалении, кровоизлияния, отеки и некроз. Заражение видом Chilodonella piscicola молоди мазу (Oncorhynchus masou) приводит к замедлению роста и хронической смертности, обусловленной дегенерацией, потерей эритроцитов, и эрозией жаберных тычинок. Тяжелая инфестация инфузорией Chilodonella hexasticha в условиях высокой плотности посадки, низких температур и плохого кормления обуславливает высокую смертность среди культуры цихлид.

Для лечения используются препараты CuSO4, KMnO4.

Epistylis и Heteropolaria

Простейшие Epistylis и Heteropolaria очень похожи друг на друга. Они одноклеточные, но живут стебельчатыми колониями. Ветвящиеся стебли прочные и не сгибаются; на конце стеблей присутствуют клетки, названные зоидами. Они имеют реснички вокруг ротового отверстия и участвуют в питании колонии. Колонии Epistylis и Heteropolaria на поверхностях рыб похожи на пучки грибов, но различия можно провести при микроскопическом исследовании. Обычно паразиты селятся на коже и плавниках рыб. Основание колонии крепится к твердой, кальцифицированной поверхности, например, чешуе и лучам плавников.

Сидячие инфузории рода Epistylis (илл слева. Rogelio Moreno, )

Epistylis и Heteropolaria размножаются почкованием и формируют телетрохии (подвижные ювенильные формы). Телетрохии образуют отросток и с помощью него прикрепляются к существующей колонии. Epistylis часто эктокомменсальные организмы, так как попросту прикрепляются к рыбе и питаются с её тела дебрисом (например, бактериями). Увеличение колонии провоцирует плохое качество воды.

Эти паразиты ослабляют и могут погубить рыбу. Epistylis провоцируют образование язв и открывают доступ бактериальной инфекции. В частности, краснуха рыб является системным заболеванием, в которое вовлечены бактерии рода Aeromonas и Epistylis. Классическое лечение Epistylis и Heteropolaria проводится с помощью поваренной соли (NaCl).

Henneguya sp.

Виды Henneguya паразиты-споровики обычно слабо влияют на здоровье рыб. Однако на протяжении двух десятилетий они вызывают пролиферативное заболевание жабр и значительную смертность в культуре канального сома.

Пролиферативное заболевание почек (Tetracapsula bryosalmonae; формально называется PKX)

Tetracapsula bryosalmonae паразиты миксоспоридии, вызывающие пролиферативное заболевание почек (PKD) у нескольких видов форели и лосося в западной Северной Америке и Европе. Обычно PKD наблюдается весной, а смертность максимальна при температуре 15°C.

К клиническим симптомам относятся воспаление почек и селезенки, побледнение жабр, потемнение тела, асцит, пучеглазие. Увеличение почек иногда заметно невооруженным взглядом, перед вскрытием. Воспаленные почки имеют узловатую или нитевидную поверхность. Эта чрезмерная реакция почек на инфекцию и неспособность паразита образовывать споры в рыбе свидетельствуют о том, что форель и лосось могут быть неестественными или аберрантными хозяевами Tetracapsula bryosalmonae. Микроскопически, окрашенные мазки ткани имеют первичные клетки паразита со вторичными или дочерними клетками, находящимися внутри первичных или около них.

Для профилактики PKD не следует зарыблять сеголеток форели вплоть до лета. Как только развилась инфекция, смертность можно снизить, увеличив соленость с 0,008 до 0,012 (примерно 1/3 от солености морской воды).

Вихревая болезнь (Myxobolus cerebralis; формально, Myxosoma cerebralis)

Вихревая болезнь, вызванная миксоспоридиями Myxobolus cerebralis, повсеместно встречается у всех видов Лососевых. Радужная форель особенно восприимчива к инфекции, и максимальные потери наблюдаются среди 6 месячных особей. Паразит атакует хрящевую ткань (молодь имеет больше хрящевой ткани). Myxobolus cerebralis инфекция в лучах может вызвать их изгибание и почернение хвоста рыб. Заражение хрящей головы приводят к деформациям головы и челюстей, тогда как инфекция слуховой капсулы дезориентирует молодую форель и заставляет её совершать хвостом вихревые движения. Тяжелое поражение губит рыбу до развития клинических симптомов.

Споры Myxobolus cerebralis имеют овальную форму и две отдельные полярные капсулы, которые видны под микроскопом.

Это простейшее имеет сложный жизненный цикл. Споры распространяются от живых, погибших и гниющих тушек рыб. Их также поглощает кольчатый червь, трубочник (Tubifex tubifex), являющийся промежуточным хозяином. Споры развиваются в актиноспоридии, которые прободают покровы рыб. Рыба также может проглотить актиноспоридии, поедая трубочника. Плазмодии развиваются в хрящевой ткани хозяина и, в свою очередь, образуют споры.

Вихревого заболевания можно избежать, если не зарыблять молодь форели моложе 6 месяцев в водоем.

Выращивание рыб в бетонных бассейнах и канальных прудах снизит вероятность заражения. Если используются земляные пруды, производственными циклами их необходимо дезинфицировать 380 граммами негашеной извести (оксид кальция) на квадратный метр дна водоема.

Химические вещества для борьбы с Простейшими

Поваренная соль (NaCl). Соль используется для уничтожения Epistylis и некоторых других внешних паразитов в емкостях для транспортировки в концентрации 1000-2000 мг/л. Кратковременные обработки, которые обычно длятся менее часа или пока рыба не проявит признаки стресса, включают концентрации 10-30 мг/л.

Перманганат калия (KMnO4) используется для обработки большинства простейших в концентрации 2 мг/л или выше, если высока органическая нагрузка в воде. Для определения необходимой концентрации проводят 15 минутный тест. Разводят четыре пробирки культуральной воды с концентрацией KMnO4 1, 2, 3 и 4 мг/л и наблюдают за цветом в течение 15 минут. Значение концентрации, промежуточное между тем, когда вода стала бесцветной и слегка розоватой, умножается на 2.5 для расчета требуемой концентрации вещества. Например, если пробирка с 1 мг/л марганцовки в течение 15 минут стала бесцветной, тогда как пробирка 2мг/л осталась розоватой, концентрация 1.5 мг/л умножается на 2.5. В результате, для обработки такой воды требуется 3.75 мг/л KMnO4. Допускаются кратковременные 20-минутные ванны с 10 мг/л KMnO4. При этом нужно следить за состоянием рыб.

Сульфат меди (CuSO

4)

Сульфатом меди обрабатывают большинство паразитов простейших на не-лососевых рыбах в концентрации, рассчитанной как частное от деления общей щелочности воды на 100, и использование этой концентрации CuSO4 в «мг/л». Например, общая щелочность воды составляет 80 мг/л, тогда для обработки рыб требуется 0,8 мг/л CuSO4. Необходимо уделить особое внимание лечению форели сульфатом меди. Простейшие на видах Лососевых могут обрабатываться концентрацией лишь 0,05 мг/л CuSO4, когда общая щелочность около 10 мг/л.

Формалин (37% формальдегид)

Формалин применяется в концентрации 15-25 мг/л для лечения не-лососевых рыб. Допускается кратковременные часовые ванны с концентрацией 125-250 мг/л. Нельзя использовать более 167 мг/л формалина при температуре выше 21°C. Обработку следует прекратить, как только рыба начала проявлять признаки стресса. Форель выдерживают в течение часа в растворе 167 мг/л при температуре 10-18°C, либо более 250 мг/л при температуре ниже 10°C.

Непосредственно перед обработкой рекомендуется выдерживать рыб в растворе поваренной соли, с целью увеличения отделения эпителиальной слизи. Эта слизь действует как защитный барьер для паразитов, поэтому снижение её количества улучшает терапевтический эффект препаратов.
——
www.aces.edu/dept/fisheries/aquaculture/pdf/4701fs.pdf

Черви-паразиты рыб заставляют своих хозяев искать тёплое место

Глобальное потепление выглядит настолько масштабной экологической катастрофой, что трудно представить себе хоть какие-нибудь мало-мальски сложные организмы, которые в результате не только не пострадали бы, но ещё и оказались бы в выигрыше. Тем не менее такие нашлись: зоологи из Великобритании сообщают, что для ленточных червей, паразитирующих на рыбах, глобальное потепление может обернуться прямо-таки расцветом.

Представление о том, что паразит внутри хозяина находится в идеальных условиях и ни о чём лучшем ему и мечтать не приходится, не вполне соответствует действительности. В частности, рыбьих паразитов может не устраивать температура окружающей среды. Исследователи из Лестерского университета заметили, что если рыба выловлена из более тёплого водоёма, то её паразиты будут крупнее, чем у той, что жила в более холодной воде. Зоологи провели эксперимент, в котором колюшку заражали ленточным червём Schistocephalus solidus и выращивали рыб в разных температурных условиях, при 15 и 20 ?C. Как пишут учёные в журнале Global Change Biology, в более тёплых условиях паразит рос в четыре раза быстрее. При этом для самой рыбы обстановка была отнюдь не оптимальной: колюшка переносила повышенную температуру хуже своих нахлебников, что, понятно, сказывалось на скорости их роста и плодовитости.

Для завершения цикла развития паразиту необходимо попасть в кишечник птицы, коей обычно оказывается зимородок или цапля. Чем больших размеров достигнет червь к тому моменту, когда его вместе с рыбой съест птица, тем больше вероятность того, что он сможет успешно закрепиться в следующем хозяине. И тем больше яиц он сможет отложить. Через 8 недель после заражения все личинки S. solidus, чьи хозяева жили в тёплой воде, могли переселяться в птицу, в то время как никто из находящихся в более прохладных условиях к этому готов не был. Более того, как оказалось, червь заставляет рыбу искать более тёплую воду, хотя для самого хозяина такие условия не являются благоприятными. То есть ленточный червь поступает по примеру известных зомбирующих паразитов, управляющих поведением хозяина в своих интересах.

Очевидно, что глобальное потепление — именно то, что нужно для этих червей. Повышение температуры окружающей среды изменит баланс между паразитом и его хозяином, поэтому рыбе будет плохо не столько от потепления, сколько от жиреющего паразита, которому для полного счастья как раз такого изменения среды и не хватало. Впрочем, триумф паразита в случае глобального потепления будет недолгим: как легко догадаться, в таких условиях червям вскоре станет просто негде жить.

Источник: science.compulenta.ru

Поля, отмеченные знаком *, обязательны для заполнения.


Паразитарные болезни рыб – экзотических и лабораторных животных

Реснитчатые простейшие относятся к числу наиболее распространенных внешних паразитов рыб. Большинство инфузорий имеют простой жизненный цикл и делятся бинарным делением. Инфузории могут быть подвижными, прикрепленными или находиться внутри эпителия. Наиболее известным организмом из последней группы является Ichthyophthirius multifiliis , у которого более сложный жизненный цикл, чем у других инфузорий.

Инфекция, вызванная I multifiliis , называется «их» или «болезнью белых пятен». I multifiliis — облигатный патоген, который не может выжить без присутствия живой рыбы. Восприимчивы все рыбы, и похожий паразит, Cryptocaryon irritans , встречается у морских видов. I multifiliis легко передается горизонтально через прямой контакт с зараженной рыбой или через фомиты (сети и т. д.). Рыба, пережившая вспышку, может быть невосприимчивой к будущим вспышкам, но также может служить источником инфекции для ранее не подвергавшихся воздействию особей.Паразит внедряется в эпителиальную ткань жабр, кожи или плавников, оставляя небольшую рану и видимые белые пятна или узелки в месте инцистирования каждого паразита. Организм наносит значительный ущерб из-за своего уникального жизненного цикла (см. ниже), который позволяет быстро усилить инфекцию. Зараженные рыбы крайне вялые и покрыты видимыми белыми точками. Смертность может быть быстрой и катастрофической. Инфекции, ограниченные жаберной тканью, могут быть не распознаны непрофессионалами (поскольку белые пятна не очень заметны), но их легко диагностировать с помощью методов биопсии жабр.Организм идентифицируют с помощью светового микроскопа при увеличении 40х или 100х. Он крупный (0,5–1 мм), круглый, покрыт ресничками, имеет характерный подковообразный макронуклеус. Его характерное движение варьируется от постоянно вращающегося до амебоидного.

Ихтиофтириоз требует немедленного и тщательного лечения. Формалин или медь часто являются препаратами выбора. Безрецептурные лекарства для домашних рыб часто содержат формалин и малахитовый зеленый и являются эффективными, но из-за нормативных требований в отношении использования малахитового зеленого ветеринар не должен отпускать их.Для успешной обработки I multifiliis необходимы многократные химические обработки (с интервалами, определяемыми температурой воды). При теплых температурах, типичных для домашних аквариумов (например, >26°C), инфицированных рыб следует лечить каждые 2–3 дня. Для контроля Cryptocaryon в морских системах обычно рекомендуется постоянное химическое воздействие в течение не менее 3 недель; часто помогает снижение солености до 16–18 ppt.

I multifiliis имеет прямой жизненный цикл, но обладает огромным репродуктивным потенциалом от каждого взрослого паразита.Взрослые особи покидают рыбу-хозяина и инцистируются в окружающую среду, высвобождая сотни неполовозрелых паразитов (томитов), которые должны найти хозяина в течение определенного периода времени (дни для тепловодных рыб, недели для холодноводных рыб), определяемого температурой воды. По этой причине оставить систему под паром — это один из способов предотвратить повторное заражение. Находясь в инцисте, паразитарные стадии жизни не поддаются химической обработке, но цисты можно удалить путем тщательной очистки и удаления мусора с гравийного субстрата.

Две важные группы инфузорий подвижны и передвигаются по поверхности кожи и жабрам рыб: Chilodonella spp (у которого есть морской аналог, Brooklynella spp) и триходиниды, встречающиеся как у пресноводных, так и у морских рыб .Рыбы, больные хилодонеллезом, обычно теряют самочувствие, и в местах наиболее сильного заражения можно заметить обильные слизистые выделения. Если жабры сильно заражены, у рыбы могут проявляться признаки дыхательной недостаточности, в том числе учащенное дыхание и кашель. Жабры могут быть заметно опухшими и слизистыми. Зараженная рыба может быть раздражена, о чем свидетельствует мигание (почесывание) и снижение аппетита. Chilodonella можно легко идентифицировать по свежим биоптатам инфицированных тканей. Они 0.5–0,7 мм, имеют несколько сердцевидную форму с параллельными полосами ресничек и движутся по характерной медленной спирали. См. таблицу: Протистан Паразиты рыб Протистан Паразиты рыб для лечения.

Несколько родов перитриховых инфузорий были сгруппированы вместе и вместе называются триходинидами. К ним относятся Trichodina , Trichodinella , Tripartiella и Vauchomia spp. Клинические признаки, связанные с инвазией триходинидами, аналогичны симптомам хилодонеллеза, хотя секреция слизи обычно не так заметна.Триходиниды легко идентифицируются при биопсии инфицированных жабр или кожной ткани. Они хорошо видны в световой микроскоп при увеличении 40×–100×. Триходиниды передвигаются по поверхности пораженной ткани и выглядят как блюдца или, если смотреть сбоку, как пузырьки. Тело организма может быть цилиндрическим, полушаровидным или дисковидным. Триходиниды характеризуются прикрепляющимся диском с короной из зубцов на адоральной поверхности присоски. Для лечения триходинид см. Таблицу: Protistan Parasites of Fishes Protistan Parasites of Fishs.Заражение Trichodina часто указывает на плохие санитарные условия и/или скученность, поэтому одной только химической обработки может быть недостаточно для полного контроля.

Tetrahymena corlissi , еще одна инфузория, может быть подвижной и обитать на поверхности, но иногда ее можно обнаружить в тканях, включая скелетные мышцы и глазные жидкости. Несколько похожи на Tetrahymena скутикоцилиаты, поражающие морских рыб. Uronema и Miamiensis , как и Tetrahymena , представляют собой каплевидные инфузории, которые, хотя в основном обнаруживаются на внешних тканях, могут быть очень инвазивными. Tetrahymena spp имеют грушевидную форму, длину 10–20 мкм, с продольными рядами ресничек и незаметными цитостомами. Наружное заражение Tetrahymena spp. нередко встречается у умирающих рыб, извлеченных со дна резервуара или аквариума, и часто связано с окружающей средой, богатой органическим материалом. Поскольку виды Tetrahymena ограничены внешней поверхностью рыбы, они легко удаляются с помощью химической обработки и санитарной обработки. Когда они развиваются внутри, они не поддаются лечению и могут вызвать значительную смертность.У рыб с внутриглазными инфекциями вида Tetrahymena развивается выраженный экзофтальм. Паразит легко идентифицируется при исследовании глазной жидкости с помощью светового микроскопа.

Ambiphyra , Apiosoma и Epistylis spp являются сидячими перитрихами, которые не питаются рыбой-хозяином; вместо этого они прикрепляются к рыбе, которая часто ослаблена, и используют свои реснички для фильтрации и поглощения бактерий и мелких микроорганизмов в толще воды. Если их увидеть в небольшом количестве, они причиняют мало вреда; однако в больших количествах они могут вызывать раздражение.Их присутствие на рыбе обычно указывает на богатую органическую среду. Часто просто выполнение больших подмен воды приводит к уменьшению популяции. Соль также может помочь контролировать числа. Ambiphyra и Apiosoma живут поодиночке, но их можно увидеть большими группами на сильно зараженной рыбе. Epistylis , Vorticella и Carchesium являются колониальными стебельчатыми перитрихами.

Паразиты становятся все более распространенными среди некоторых видов рыб, используемых в суши

«Официант, у меня в суши червяк.

Посетители, возможно, произносят эти слова сегодня с большей вероятностью, чем раньше. десятилетия, поскольку обилие паразитических червей Anisakis , заражающих рыб вокруг земного шара теперь 283 раза какой она была в 1970-х, сообщают исследователи 19 марта года Global Change Биология .

Черви рода Anisakis , также называемые китовыми червями, может вызвать рвоту и диарею у людей, которые их проглатывают. К счастью, замерзнуть филе убивает паразитов, и выращенная рыба редко ими заражается.Суши повара и другие поставщики рыбы могут обнаруживать и удалять червей, которые могут достигать до 2 сантиметров в длину. Но рост числа червей может означать плохое новости для некоторых морских животных.

Исследователя проанализировали сотни глобальных научных исследований публикуется с 1967 года для оценки количества червей — как Anisakis , так и родственный род под названием Pseudoterranova — за особь рыбы. В целом, данные включали более 55 000 экземпляров 215 видов рыб.

В 1978 году, в первый год, за который исследователи достаточно данных для обеих групп червей, ученые сообщили, что нашли менее одного китового червя в среднем на 100 рыб. К 2015 году они нашли более одного Anisakis. В среднем 90 090 червей на особь. Тенденция сохраняется для рыбы видов и географических регионов, и независимо от методов, используемых для количественной оценки червей, которые варьировались от простого вскрытия до растворения тканей рыбы с помощью кислота. Однако глобального роста сообщений о Pseudoterranova не было, также известные как тюлени.

Эта путассу кишит червями Anisakis . В 1970-х паразиты были обнаружены менее чем у 1 из 100 рыб. Теперь в среднем на одну рыбу приходится более одного паразита, поэтому, хотя у одних рыб может не быть ни одного, у других их может быть много. разнообразные хозяева вигглеров: яйца червей могут поглощаться крилем, который поедаются головоногими, такими как кальмары, которые поедаются рыбами.Все это съедены китами и дельфинами.

Популяции любого из этих хостов могут оказаться под угрозой, когда Анисакис изобилие велико, а результаты не очень хороши. Например, китовые черви. заражение атлантического лосося может вызвать синдром красных вен с отеком и кровотечение из отверстия в пищеварительном и репродуктивном тракте. Черви часто обнаруживается при вскрытии китов, хотя неясно, насколько больными могут быть инфицированные животные. стать, говорит соавтор исследования Челси Вуд, эколог паразитов в Вашингтонский университет в Сиэтле.

Тот факт, что черви Anisakis становятся все более общее может означать, что виды-хозяева достаточно многочисленны, чтобы поддерживать стремительно развивающийся паразит. населения, говорит Вуд. Если популяции вида-хозяина сокращались, черви будут бороться, чтобы завершить свой жизненный цикл. Вместо этого «эти черви могут быть сигналом того, что дела с океанскими экосистемами улучшаются», — говорит она.

Например, повышение Anisakis может быть связано с факт, что какой-то кит население восстанавливается ( SN: 18.11.19 ).Эти морские млекопитающие играют решающую роль в жизни червей. цикл: Anisakis размножаются только в китообразные. Самые ранние точки данных Вуда относятся к периоду до Международного китобойного промысла. Мораторий Комиссии на коммерческий китобойный промысел вступил в силу в 1986 г. несколько наций упорствуют в охоте.

Еще одно возможное, хотя и гипотетическое объяснение Обилие паразитов заключается в том, что жизненные циклы паразитов могут ускоряться по мере воды океана нагреваются из-за изменения климата.

В настоящее время команда Вуда изучает образцы музейных рыб, назад во времени, чтобы определить, являются ли сегодняшние популяции червей признаком долгосрочного ухудшения состояния окружающей среды или восстановления после антропогенного ущерба океану и его жителей.

Подпишитесь на последние новости от

Science News

Заголовки и резюме последних статей Science News , доставленных на ваш почтовый ящик

Спасибо за регистрацию!

При регистрации возникла проблема.

«Я чувствую, что речь идет о восстановлении до базовый уровень», — говорит Вуд. «В нетронутом океане было множество морских млекопитающих. выбрасывает много Anisakis , которые заразили рыбу в большом количестве.

Команда также исследует, что такое высокий паразит нагрузка может означать для этих морских млекопитающих, сосредоточив внимание на борющемся убийце популяция китов у западного побережья США. «У нас мало информации о том, каковы эффекты», — говорит Вуд.

Рыбный паразитолог Курт Бухманн говорит, что результаты Вуда совпадают его собственные наблюдения. «У меня сложилось общее впечатление, что появление Anisakis фактически увеличился, по крайней мере, в некоторых водах», — говорит Бухманн из Копенгагенский университет.Но в то время как новый метаанализ сообщает о глобальном Бухманн отмечает, что в среднем по популяции червей характер паразитов может варьироваться локально. В Например, в Балтийском море Бухманн наблюдал резкое увеличение численности тюленей. вместе со своим хозяином, серыми тюленями, хотя новое исследование не находит изменений в общая численность тюленей.

Несмотря на результаты исследования, Вуд не потеряла вкус к красивое рыбное филе. Она уверена, что заготовщики выберут червей, а суши По ее словам, повара превосходят даже ученых в их обнаружении.«Я до сих пор ем суши.»

Семь паразитов, вредных для вашей тропической рыбы

Как и любое другое существо, ваша рыба может болеть. и паразиты. Когда у рыб есть паразиты, они очень заразны. Если у рыбы действительно есть паразиты, настоятельно рекомендуется отделить рассматриваемую рыбу от всей другой водной флоры и фауны. ваш аквариум. Вытаскивание рыбок из аквариума в портативный контейнер, вероятно, лучший способ сделать это.Иначе паразиты, скорее всего, распространятся по всему аквариуму пока не заразится вся рыба. Ниже приведен список из семи паразитов. которые распространены среди тропических рыб:

Рыбья вошь — этот паразит хитрый, потому что это так трудно заметить. Этот паразит будет прятаться, принимая того же цвета, что и его хозяин. Рыба-хозяин попытается достать избавиться от вшей, растирая их тело о камни, растения или вдоль борта танка, пытаясь удалить их.

Якорные черви – эти паразиты самки и имеют голову в форме якоря, которую они используют, чтобы прорываться в плоть своей жертвы. Однажды они зарываются в рыба может быть небольшое кровотечение на рыбе, где голова прикрепилась. Вы также можете увидеть маленький червяк или щупальце белого цвета, торчащее из место, где паразит прикрепился. Потому что этот паразит головка имеет форму якоря, ее трудно снять, а если потянуть из-за силы может привести к тому, что у рыбы появится кровоточащая рана.

Пиявки – Пиявки питаются кровью и должны быть удалены как можно скорее. Хотя пиявка покидает рыбу как только он наполнится, потеря крови может быть смертельной для нежная тропическая рыба. Снять паразита, схватив его может вызвать срыгивание и оставить части челюсти пиявки прикрепляется к ране, увеличивая риск инфицирования. А лучший метод — использовать ноготь, чтобы сломать печать ротовые присоски на обоих концах пиявки.Начните с малого конец, а затем продолжить с большим концом. пиявка будет отделите его челюсти, как только печать присоски сломана.

Flukes — существует два распространенных типа: кожные сосальщики прикрепляются к коже вашей тропической рыбы и вызывают вздутие, жаберные двуустки мешают рыбе дышать. Жабры станут розовыми, и рыба, вероятно, оставаться у поверхности воды, где ему легче дышать.Эти кожные сосальщики могут вызывать локальные язвы и отеки.

Ichthyophthirius — Так называемый ихтиофтириус или «белая пятнистость» — самая распространенная болезнь тропических рыб, вызываемая вероятно, самым распространенным пресноводным паразитом. Типичный поведение зараженной рыбы включает потерю аппетита, растирание себя против объектов, мигая и прячась ненормально. Когда рыба в вашем аквариуме заражена, карантин необходим для предотвратить распространение рыбой тропической болезни рыб на другие обитатели танка.

Piscinoodinium – микроскопический паразит вызывает «болезнь жажды золота», названную в честь золотых узоров которые появятся на чешуе вашей рыбы. Как только ваша рыба инфицированных, болезнь тропических рыб можно лечить с помощью меди соли, которые уничтожают паразитов в вашей воде.

Hexamita – эти паразиты также известны как дырка в голове болезнь. Они в основном внутренние паразиты.Это вредно для вашей рыбы, когда она слаба из-за возраста, стресса или плохих условий воды.

Хотите узнать, как сэкономить на лечении домашних рыбок? кликните сюда

Для предотвращения любой формы паразитов и болезней рыб принимайте хороший уход за вашей рыбой и аквариумом. Вот несколько советов помощь:

  • Так как почти каждого паразита можно обнаружить, убедитесь, что каждый раз хорошенько разглядывать своих водных друзей день.Проверьте наличие видимых паразитов, таких как черви, пиявки или двуустки на теле рыбы. Борьба с паразит до того, как он разовьется, может предотвратить вспышку болезнь тропических рыб.
  • Удалить паразитов вручную с рыбы; последующее лечение имеет жизненно важное значение для предотвращения роста бактерий или грибков.
  • Посмотрите, нет ли у вашей рыбы мутных глаз, белых пятен или хватая ртом воздух, трется о предметы и вялый.Эти симптомы могут быть вызваны рыбьими вшами.
  • Внутренние паразиты вызывают потерю аппетита, вялость и беспорядочное плавание.
  • Обратите внимание на покраснение, раздражение и/или нитевидные черви, исходящие из область хвоста рыбы. Если это сопровождается вздутием живота, эти симптомы указывают на заражение нематодами, также известный как круглый червь. Нематоды обитают в кишечника и требует осторожного обращения.
  • Ищите любые необычные маленькие белые или золотые пятнышки, напоминающие порошок на рыбу.
  • Наблюдайте за плавающей рыбой, чтобы убедиться, что она не выглядит нестабильной или его плавники кажутся прижатыми (загнутыми) к телу.

Паразиты рыб растут

Количество паразитических червей в океанских рыбах увеличилось в 90 раз.

Автор:

к Брайан Оуэнс

Количество слов

21 декабря 2018 г. | 600 слов, около 3 минут

Этой истории больше 3 года .

Копия основной части статьи

Растет число рыбных паразитов, что создает риски для здоровья человека и экономики, основанной на рыболовстве. Теперь у исследователей есть новый способ отслеживать их численность — копаться в старых записях и музейных образцах.

В последние годы наблюдались вызывающие тревогу вспышки заболеваний у рыб и других морских видов, в том числе одна, вызвавшая массовую гибель морских звезд в северо-восточной части Тихого океана, начиная с 2013 года. фактическое увеличение числа болезнетворных микроорганизмов и паразитов, или ученые просто замечали их чаще, потому что уделяли им более пристальное внимание.Челси Вуд, изучающая морских паразитов в Вашингтонском университете в Сиэтле, решила проследить, как некоторые паразиты изменились с течением времени, и ей пришлось проявить творческий подход, чтобы найти ответы.

Во-первых, Вуд и ее команда просмотрели старые журнальные статьи, чтобы отследить долгосрочные изменения в двух родах паразитических червей-нематод — Anisakis и Pseudoterranova — которые заражают различных морских существ, включая рыбу, моллюсков, китов, и тюленей, и это может вызвать заболевание у людей, если их употреблять с сырой или недоваренной рыбой или кальмарами.Из-за беспокойства общественного здравоохранения ученые наблюдали за этими паразитами в течение последних нескольких десятилетий. Вуд обнаружил, что среднее количество Anisakis на рыбу увеличилось в 90 раз в глобальном масштабе в период с 1962 по 2015 год, а Pseudoterranova увеличилось в полтора раза между 1978 и 2015 годами.

Это увеличение означает, что «употребление сырых морепродуктов сегодня может быть немного более рискованным, чем это было в 1970-х», — говорит Вуд, хотя она добавляет, что меры общественного здравоохранения в развитых странах достаточно хороши, чтобы обеспечить безопасность деликатеса, и она по-прежнему регулярно ест суши.Черви представляют большую проблему для их водных хозяев: зараженная рыба может страдать от повреждения органов, а ослабленная рыба с большей вероятностью заболеет и умрет.

Чтобы еще глубже заглянуть в прошлое, команда исследовала сохранившуюся коллекцию рыб в Музее Берка Вашингтонского университета, которую Вуд описывает как капсулу времени паразита. «Паразиты сохраняются вместе с образцом, и их все еще можно обнаружить», — говорит она. «Вы можете увидеть, какими были паразиты у рыбы 1888 года.

Изучив 306 английских камбал, собранных в Пьюджет-Саунд, штат Вашингтон, исследователи обнаружили ранее не зарегистрированное восьмикратное увеличение числа нематод-паразитов Clavinema mariae с 1930-х годов. Хотя этот паразит не поражает людей, он является серьезным вредителем для единственного рыболовства в Англии — никто не хочет есть рыбу, полную червей.

Скайлар Хопкинс, эколог-паразитолог из Технологического института Вирджинии, говорит, что способность изучать исторические нагрузки паразитов в сравнительных целях имеет большое значение для экологов.«Это открывает совершенно новый мир для изучения прошлого», — говорит она.

Неясно, что именно вызвало изменения в паразитарных нагрузках у рыб, но вполне вероятно, что люди сыграли свою роль. В случае с камбалой, например, сельскохозяйственный сток в Пьюджет-Саунд может увеличить популяцию копепод, которые одновременно являются хозяином нематод и важным источником пищи для рыб.

Вуд говорит, что разные паразиты могут по-разному реагировать на изменения в окружающей их среде.Она обнаружила, что в районах с сильным рыбным промыслом количество паразитов со сложными жизненными циклами с несколькими хозяевами, как правило, сокращается, а число паразитов с более простым жизненным циклом, как правило, увеличивается. «Это всего лишь две истории, — говорит она. «Есть еще много, и нам интересно узнать о них всех».

Хопкинс говорит, что важно понимать, как изменения окружающей среды влияют на паразитов — даже на тех, которые обычно не влияют на людей, — чтобы предсказать, как они могут реагировать на изменения в будущем и как эти изменения могут каскадом отразиться на экосистеме.«Паразиты встроены в пищевые сети», — говорит она. «Когда вы выбиваете из строя одну вещь, это вызывает изменения во всей системе».

Паразитарные болезни тропических и декоративных рыб

Рыба может служить промежуточным, транспортным и/или окончательным хозяином для различных паразитов. В результате можно обнаружить паразитов, заражающих внешние поверхности кожи, обитающих в просвете любого органа или глубоко внедряющихся в паренхиму любой ткани хозяина. Паразитарные инфекции у рыб диагностируются при непосредственном наблюдении, влажных препаратах кожи, жабр и плавников, образцах фекалий, мазках тканей, мазках крови и гистопатологии.

Наружные простейшие паразиты

Многочисленные простейшие паразиты проникают в эпителиальные ткани кожи и жабр рыб. Возможно, наиболее легко узнаваемым простейшим паразитом рыб является Ichthyophthirius multifiliis , обычно называемый «Их» или «болезнью белых пятен». Этот крупный паразит вызывает множественные небольшие выпуклые белые поражения, которые развиваются в результате проживания паразита на коже, плавниках и жаберной ткани хозяина. Паразит покрыт наружным поверхностным слоем ресничек и может быть идентифицирован по наличию относительно крупного подковообразного или С-образного макронуклеуса. Cryptocaryon irritans является морским эквивалентом пресноводного организма Ichthyophthirius и вызывает аналогичные клинические симптомы. Этот паразит является еще одной относительно крупной инфузорией, но не имеет большого С-образного ядра, характерного для Ichthyophthirius . Еще одна инфузория, которая иногда вызывает проблемы, вторгаясь в более глубокие ткани рыб, — это Tetrahymena pyriformis . Этот паразит вызывает «тет» или «болезнь гуппи» у ряда видов тропических аквариумных рыб, особенно у гуппи, неоновых тетр и моллинезий.Небольшой организм цилиндрической формы проникает в эпителиальные ткани и продолжает мигрировать вдоль фасциальных плоскостей нижележащих мышц, проникая во многие внутренние органы.

Многие паразиты рыб на самом деле не внедряются в ткани, а питаются слизью, бактериальными и отслоившимися эпителиальными клетками на поверхности или имеют органы прикрепления, которые закрепляют паразита на поверхности кожи и питаются бактериями, простейшими и другими материала в проходящей воде. Из простейших, поражающих поверхность кожи рыб, относится группа уплощенных, дисковидных инфузорий родов Trichodina, Trichodinella и Tripartiella .Эти паразиты пресноводных, солоноватоводных и морских видов легко идентифицируются по их внутреннему круглому зубчатому кольцу, которое имеет как внутреннее, так и внешнее кольцо зубоподобных выступов. Те, которые паразитируют в жабрах, как правило, наиболее патогенны, поскольку вызывают значительное раздражение тканей, гиперплазию эпителиальных тканей и проблемы с дыханием. Chilodonella sp. представляет собой уплощенное в дорсовентральном направлении овальное простейшее с ресничками, расположенными отдельными полосами вдоль поверхности тела.Этот пресноводный паразит вызывает раздражение жабр и плавников своей пищевой активностью, что приводит к гиперплазии и слиянию жаберных пластинок и гиперплазии плавниковой ткани. Ихтиободо вид. ( ~ Costia sp. ) — чрезвычайно маленький грушевидный жгутик пресноводной рыбы. Этот паразит может быть найден либо прикрепленным одним из двух своих жгутиков к коже и жаберным тканям, либо в воде, демонстрирующим характерное поведение при плавании по спирали.

Разнообразная группа реснитчатых паразитов, которые прикрепляются непосредственно к коже рыбы и фактически не питаются рыбой, а получают пищу из воды, когда она проходит мимо рыбы.К ним относятся Ambiphyra sp., Trichophyra sp., Epistylis sp. и Heteropolaria sp., все из которых имеют диск для прикрепления к поверхности эпителиальных клеток кожи или жабр. Хотя эти паразиты обычно не вызывают проблем в небольших количествах, на здоровье рыб может повлиять, если большое количество паразитов присутствует на жабрах, где они могут нарушать диффузию дыхательных газов и продуктов выделения.

Динофлагелляты родов Piscinoodinium (Oodinium), Amyloodinium и Crepidoodinium паразитируют на пресноводных и морских видах рыб.Эти паразиты вызывают заболевание, обычно называемое «бархатной болезнью» или «ржавчиной» из-за красноватой окраски, которую паразиты придают пораженному телу, плавникам или жабрам. Паразит имеет пальцевидные отростки (ризоиды), которые проникают в эпителиальные клетки и действуют как удерживающие органы и получают из клеток питательные вещества. Заражение жаберной ткани вызывает гиперплазию эпителия и слияние пластинок, что приводит к вторичной гипоксии и нарушению осморегуляции.

Внутренние простейшие паразиты

Spironucleus sp.и Hexamita sp. Мелкие жгутиковые паразиты, часто встречающиеся в просвете кишечника пресноводных и морских тропических рыб. Легкие инвазии кишечного тракта обычно протекают бессимптомно, в то время как тяжелые инвазии могут быть патогенными, вызывая некроз и отторжение кишечного эпителия. Клинические признаки включают отсутствие аппетита, расточительство, слизистый или бледный стул, плохое состояние, истощение и смерть.

Паразиты Microsporidean (теперь классифицируемые как грибковые организмы) образуют заполненные спорами цисты почти в любой ткани многих пресноводных и морских видов.По мере увеличения размера кисты инфицированная мышечная ткань смещается и приобретает белый цвет. Pleistophora hyphessobryconis вызывает синдром, называемый «болезнью неоновой тетра», у зебровых данио, цихлид и карповых. Миксоспориды — распространенный споровик, паразитирующий у многих видов рыб. Эти паразиты образуют наполненную спорами тканевую кисту, которая смещает или нарушает функцию инфицированной ткани.

Кокцидиальные ( Eimeria sp. и Goussia sp.) инфекции желудочно-кишечного тракта и почек, соответственно, являются обычным явлением у молоди рыб, где инфекция может вызвать плохой рост, истощение и смерть.Инфекции также могут быть обнаружены у взрослых рыб, но возникающая в результате патология, как правило, менее тяжелая.

Как у пресноводных, так и у морских рыб есть ряд жгутиковых гемопротозоидов, которые могут вызывать проблемы со здоровьем. Трипаносома sp. был описан от голубоглазого плекостомуса ( Panaque suttoni ), завезенного из Южной Америки, а Cryptobia iubilans был описан как вызывающий гранулематозную болезнь у африканских цихлид и дискусов.

Гельминты-паразиты

Моногенеи — паразитические плоские черви, поражающие внешние поверхности многих видов пресноводных, солоноватоводных или морских рыб.У моногенеев есть передняя ротовая присоска, используемая для питания слизью и отслоившимися эпителиальными клетками, а задний конец имеет удерживающий орган для прикрепления к хозяину. Эти паразиты вызывают очаговое раздражение, повышенную продукцию слизи и гиперплазию эпителиальных тканей в связи с их питающей активностью вокруг центральной точки прикрепления.

Многие виды трематод, цестод, нематод и скребней используют рыбу в качестве промежуточного хозяина для развивающихся паразитов.Эти личиночные стадии обычно вызывают минимальную патологию, но тяжелые инвазии могут привести к смещению тканей или органов, задержке роста и истощению. Рыба также может служить окончательным хозяином и может содержать в просвете своего кишечного тракта множество взрослых дигенетических трематод, цестод, нематод и скребней. Как и у млекопитающих, эти гельминты обычно вызывают минимальную патологию у рыб-хозяев, хотя сильное заражение может вызвать плохой рост и истощение.

Ракообразные паразиты

Ряд ракообразных паразитирует на коже и жабрах тропических и декоративных рыб. Lernaea sp, или «якорный червь», представляет собой веслоногих ракообразных рыб, выращиваемых в пруду, особенно золотых рыбок, карпов и кои. У взрослой самки паразита развивается передний конец в форме якоря, который внедряется в мышцы рыбы, а задняя часть тела самки свисает снаружи рыбы. Ergasilus sp. является веслоногим паразитом, у которого усики преобразованы в специальные клешни, используемые для захвата жаберных лепестков прудовых и декоративных рыб. Рыбья вошь, Argulus sp., является ракообразным паразитом многих видов прудовых и декоративных рыб. Этот уплощенный в дорсо-вентральном направлении овальный паразит имеет восемь коротких ног, спинной панцирь, покрывающий тело, два вентрально расположенных круглых присосательных диска, два темных глазных пятна и вентральный колющий стилет для кормления. Этот паразит вызывает сильную воспалительную реакцию в месте проникновения стилета и участвует в передаче ряда бактериальных, вирусных и гемопротозойных заболеваний. Пиявки также иногда заражают декоративные и прудовые виды рыб.Хотя обычно это не связано с какой-либо серьезной патологией, большое количество пиявок у человека иногда может вызывать тяжелую анемию и смерть.

Лечение

Лечение внешних паразитов довольно простое, поскольку большинство из них восприимчивы к различным передающимся через воду химиотерапевтическим соединениям, таким как соль, формалин или медь, но лечение внутренних паразитов может быть трудным или невозможным. В дополнение к использованию химиотерапевтических средств для лечения паразитов, для снижения дальнейшего заражения паразитами необходимы правильные методы содержания.

август 2013 г.

Паразиты и черви в лососе и другой рыбе

Вам может понравиться В поисках Немо , но никто не любит находить нематод в пище.

Употребление в пищу рыбы поддерживает индустрию, которая ежегодно убивает триллионы рыб, прокалывая, раздавливая, удушая и потрошая их, пока они еще в сознании, и подвергает вас риску заражения круглыми червями (нематодами), плоскими и ленточными червями. . Вероятность того, что хотя бы один из этих паразитов скрывается в вашей рыбной «муке», может быть выше, чем вы думаете.

Есть ли паразиты у всех рыб?

Каждый вид дикой рыбы может содержать нематод. Одно исследование показало, что более 90% определенных видов выловленной в дикой природе рыбы были заражены личинками нематод. Другой пришел к выводу, что один тип червя, заражающего рыбу по всему миру, в настоящее время в 90 165 283 раза в 90 166 раз больше, чем в 1970-х годах. Ожидается, что это число будет только расти — исследователи обнаружили, что более высокие температуры, вызванные изменением климата, значительно увеличат количество паразитов, обнаруженных в выловленной в дикой природе рыбе.

Черви в лососе

Страшные истории о людях, обнаруживших червей в лососе, не должны вызывать удивления. Данные, приведенные Центром по контролю за заболеваниями Британской Колумбии, свидетельствуют о том, что 75% диких тихоокеанских лососей заражены анизакидными нематодами. В другом исследовании исследователи на Аляске обнаружили заражение нематодами у каждых исследованных ими свежевыловленных лососей.

Черви в разводимой рыбе

А как насчет рыбы, которую выращивают на аквафермах, где рыбоводы загоняют ее в грязные вольеры и иногда морят голодом несколько дней? Если вы догадались, что стрессовая, многолюдная и антисанитарная среда на аквафермах повышает риск заражения паразитами, вы были правы.

Черви настолько свирепствуют на этих рыбных заводах, что фермеры используют антибиотики, пестициды или химические вещества, чтобы контролировать инфекцию и болезни. Одно исследование даже пришло к выводу, что «редко можно найти какие-либо виды аквакультуры, которые не были бы затронуты хотя бы одним проблематичным паразитом в процессе выращивания». И рыбоводческие фермы не совсем откровенны о вспышках своих паразитов — исследователи обнаружили, что «о них часто не сообщается, скрывая серьезность и воздействие определенных паразитов.

Безопасно ли есть рыбу с паразитами?

Употребление в пищу паразитов может вызвать проблемы со здоровьем, от чрезвычайно неприятных до смертельных. Если в ваших суши полно круглых червей, приготовьтесь разбить лагерь в ванной, пока вы испытываете такие симптомы, как боль в животе, тошнота, рвота и кровавый стул. Заражение ленточными червями вызывает аналогичные симптомы, но они могут длиться еще дольше (в некоторых случаях десятилетиями), а заражение плоскими червями может вызвать тяжелые заболевания печени и легких, анемию и даже смерть.

Действительно ли тарелка с рыбным мясом стоит риска изнурительных проблем со здоровьем или даже смерти? Сохраните свое здоровье и жизни рыб, переключившись на веганские морепродукты, которые обладают великолепным вкусом и не содержат ленточных червей или других загрязняющих веществ, присутствующих в настоящей рыбе.

Go Fish — для веганских морепродуктов!

Веганские бренды морепродуктов, такие как Vegan ZeaStar, The Plant Based Seafood Co., Ocean’s Halo и другие, предлагают деликатесы без рыбы, такие как веганский тунец, рыбный соус и крабовые котлеты, которые можно найти в популярных продуктовых сетях.Или поэкспериментируйте с приготовлением вкусных веганских морепродуктов дома, используя такие рецепты, как вегетарианский салат из тунца и арбузно-кунжутную поке.

Ловите доброту, а не паразитов

Рыбы умны и общительны, и они не хотят, чтобы их убивали ради еды. Сочувствуйте водным животным, отказываясь есть их и поощряя рестораны морепродуктов, такие как Long John Silver’s и Captain D’s, продавать веганские морепродукты.

NJDEP Отдел рыбы и дикой природы

В здоровой экосистеме поддерживается баланс между рыбой и этими организмами.Если окружающая среда нарушена таким образом, что это вызывает стресс у рыб, баланс может быть нарушен и могут возникнуть проблемы со здоровьем. Большинство инфекционных агентов, обнаруженных в рыбе, не опасны для человека, а полное приготовление рыбы убивает их.

На этой странице показаны некоторые распространенные заболевания рыб и инфекционные агенты, которые можно увидеть в штате. Для получения подробной информации об этих или других заболеваниях рыб обращайтесь к специалистам по охране здоровья рыб.


Фурункулез форели
Нажмите, чтобы увеличить
Фурункулез назван в честь приподнятых мышечных поражений, напоминающих кожные фурункулы (фурункулы), которые возникают у хронически инфицированных рыб (а и б).При вскрытии этих фурункулов становится очевидным мышечный некроз и кровоизлияние (с). В лаборатории мы можем проверить наличие фурункулеза, изолируя бактерии в питательных средах; типичные изоляты бактерии образуют диффундирующий коричневый пигмент в областях роста бактерий (d). Подробнее о фурункулезе.

Вирус карпового герпеса-2, вызывающий HVHN
Нажмите, чтобы увеличить
В июне 2013 года герпесвирусный гематопоэтический некроз золотых рыбок (HVHN) стал причиной массовой гибели золотых рыбок в озере Раннемеде (округ Камден), вероятно, вызванной повышением температуры воды в сочетании с высокой плотностью золотых рыбок в озере.Золотая рыбка является признанным инвазивным видом в Северной Америке и встречается во многих водных путях по всему штату.

Вирус Cyprinid herpesvirus-2 (CyHV-2) отвечает за HVHN. Это заболевание может вызывать высокую смертность во время вспышек, которые чаще всего случаются при температуре воды выше 65F (18C). Признаки болезни у золотых рыбок включают бледность жабр (а), вялость, анорексию и отек селезенки и почек.

Используя гистологию, мы можем искать доказательства HVHN во внутренних органах.Гистологические признаки HVHN включают бранхиты и слияние жаберных пластинок (b), очаговый некроз клеток в почках и селезенке (c) и клеточные ядра по всему очагу поражения, содержащие маргинальный хроматин (d). Чтобы подтвердить наличие вируса, мы используем методы молекулярной биологии или просвечивающую электронную микроскопию для прямой визуализации вируса (e).

Этот вирус специфичен для золотых рыбок и не заразит другие виды.


Личинки нематод в коже краевой сумасшедшей
Нажмите, чтобы увеличить
Личинки нематод Ictalurids (сомы, такие как Margined Madtom, Noturus insignis ) образуют пузыревидные кисты под кожей (a и b).В каждом пузыре может присутствовать несколько нематод, как видно под световым микроскопом (с).

Подобные личинки нематод были обнаружены у других сомов, таких как канальный сом, коричневый бычок и белый сом, но вид нематод остается неописанным, а жизненный цикл неизвестен. С зараженной рыбой следует обращаться осторожно, поскольку окончательный хозяин этого паразита неизвестен.


Черная пятнистость в северной щуке
Нажмите, чтобы увеличить
Черная пятнистость вызывается дигенеевым паразитом, который может проникать в кожу рыбы и внедряться в нее, обратите внимание на небольшие выпуклые черные пятна на коже рыбы.Черное пятно представляет собой пигмент меланин, который является реакцией хозяина на присутствие паразита.

Lymphocystis у синежаберной солнечной рыбы и большеротого окуня
Нажмите, чтобы увеличить
Вирус лимфоцистной болезни представляет собой ДНК-иридовирус, вызывающий опухолевидные образования на коже и плавниках рыб. На изображении синежаберный солнечник с лимфоцистами преимущественно на плавниках, а также на коже (рис.а и б). В тяжелых случаях, как у этой солнечной рыбы, вирус может быть обнаружен во внутренних органах.

Большеротый окунь (рис. c и d) имеет кровоточащие опухолевидные образования на грудных и анальных плавниках, вызванные этим вирусом. Как правило, это самоизлечивающееся заболевание, поражающее периферические органы (кожу и плавники).


Digenean Posthodiplostomum Минимум у Sunfish
Нажмите, чтобы увеличить
Posthodiplostomum minimum — очень распространенный и широко распространенный дигенейный паразит рыб.Инцистированные паразиты наблюдаются в почках солнечной рыбы (стрелки). Промежуточными хозяевами этих паразитов являются рыбы и улитки, а окончательными — птицы.

Philometra rubra в полосатом окуне
Нажмите, чтобы увеличить
Нематода (аскарида) Philometra rubra в висцеральной полости полосатого окуня.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован.